细胞生长曲线绘制-细胞计数法

以下主要介绍通过细胞计数法绘制生长曲线,帮助我们更好的了解细胞的生长状态及活力,从而指导下游实验操作。
细胞计数法绘制生长曲线,是细胞培养研究中常用的技术手段。原理就是通过测定单位体积内的细胞数量,得到细胞的总浓度进而计算出细胞总数
典型的细胞生长曲线分为四个时期:延滞期,指数期,稳定期和衰亡期。不同时期的细胞生长状态和性能各不相同。通过测定生长曲线,可以测定细胞绝对生长数,判断细胞活力,可用于测定药物等外来因素对细胞生长的影响,有助于我们选择该时期的细胞进行细胞下游实验(瞬时转染或稳定转染)。以下介绍细胞计数的主要方法和注意点:
一、实验准备:
仪器:二氧化碳培养箱,显微镜,超净工作台,血球计数板。
试剂:胰蛋白酶,培养基(血清)。
二、实验操作:
1、生长良好的细胞,用胰蛋白酶消化,离心;
2、离心后去上清,加入新鲜适量的培养基重悬细胞,使之成为单细胞悬液;
3、按照一定的倍数稀释该单细胞悬液,稀释倍数以稀释结果细胞数在 20-200 之间为合适倍数;
4、准备血球计数板,洗净晾干;
5、吸取一定量的细胞悬液,加样到血球计数板上,显微镜下计数;
6、按照血球计数板的计数原理进行细胞计数;
7、计算细胞总数,调整细胞至一定浓度(1x105/ml)。细胞浓度=细胞计数板得到的细胞数量/4x 稀释倍数 x104/ml;
8、细胞再培养,准备 24 孔板,每孔中加入 0.1ml 的细胞(即 1x104个细胞)和 0.9ml 的细胞培养基,轻轻晃动孔板(十字方向晃动),使细胞分布均匀,并进行常规细胞培养(48h 后换液培养);
9、培养 48h 后,即可每过 24h 取样一次,每次取样至少取 3 个孔的细胞,多次计数取平均值,提高准确性),取样细胞常规胰蛋白酶消化,制备单细胞悬液,显微镜下进行细胞计数;
10、计数结果,以时间(d)为横坐标,细胞数为纵坐标,绘制细胞生长曲线。
三、结果分析:
根据培养的时间和细胞计数的结果得到如下图,细胞培养初始几天生长缓慢,为延滞期。两到三天之后细胞进入对数生长期,此时细胞生长最为旺盛,细胞活力也相对最佳,通常在我们的细胞转染或构建稳定细胞系时选择对数生长期的细胞。一段时间后细胞进入稳定生长时期。

 

四、操作要点:
1、细胞用胰蛋白酶消化,消化时间要自己把握,时间短细胞消化不好形成团状,时间长细胞死亡率可能会增加,制备成单细胞悬液即可;
2、细胞计数时,按照计数原理数细胞,每个大方格中的细胞大于 200 小于 20,则稀释倍数不适,需重新稀释。在消化细胞计数之前,可自己估算培养瓶中的总细胞数,这样可以预估下稀释的倍数,避免重新稀释;
3、细胞接种时细胞摇均匀,接种按照十字方向晃动,晃动时间可以延长,以避免形成细胞团为准,但要防止细胞液溅出;
4、细胞培养易被污染,污染原因也多种多样,实验室环境,细胞自身原因,如果为菌类污染建议丢弃重新复苏培养。
细胞计数法绘制生长曲线,操作相对简便。此外,MTT 比色实验也能检测细胞的存活和生长,得到细胞生长曲线,且灵敏度高,重复性好。 

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martin
  • 本文由 发表于 2025年3月20日 11:15:45
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匿名

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